oligella urethralis что это
Активность антибактериальных средств in vitro
Грамотрицательные неферментирующие микроорганизмы широко распространены в окружающей среде. Одной из серьезных проблем является диагностика вызванных ими инфекций, связанная с объективными трудностями их выделения и идентификации. Второй проблемой является то, что для них характерна полирезистентность к антимикробным препаратам, включая те, которые обычно активны против Pseudomonas aeruginosa.
В данном исследовании определялась антибактериальная активность in vitro различных препаратов по отношению к 177 выделенным в клинике штаммам неферментирующих бактерий (кроме Pseudomonas aeruginosa и Acinetobacter spp.). МПК определялась методом разведений в агаре. Использовали среду Мюллера-Хинтона. Оценивали активность ампициллина, пиперациллина, пиперациллин/тазобактама, сульбактама, цефоперазона, цефоперазон/сульбактама, цефтазидима, цефепима, азтреонама, имипенема, меропенема, колистина, гентамицина, амикацина, триметоприм/сульфаметоксазола, хлорамфеникола, эритромицина, рифампицина, норфлоксацина, ципрофлоксацина и миноциклина.
У 7 изолятов: Sphingobacterium multivorum(2), Sphingobacterium spiritivorum(1), Empedobacter brevis(1), Weeksella virosa(1), Bergeyella zoohelcum(1) и Oligella urethralis (1), вместо чувствительности к цефоперазону или сульбактаму определяли чувствительность к амоксициллин/клавуланату и ампициллин/сульбактаму.
Полирезистентность к антибактериальным препаратам была характерна для таких возбудителей, как Stenotrophomonas maltophilia, Burkholderia cepacia, Chryseobacterium spp., Myroides spp., Achromobacter xylosoxidans и Ochrobactrum anthropi.
В то же время, такие микроорганизмы, как Pseudomonas stutzeri, Shewanella putrefaciens-algae, Sphingomonas paucimobilis, Pseudomonas oryzihabitans, Bergeyella zoohelcum, Weeksella virosa и Oligella urethralis часто были чувствительны к большинству из тестируемых антибиотиков.
Учитывая, что различные виды возбудителей, образующих группу грамотрицательных неферментирующих микроорганизмов, демонстрируют различные показатели антибиотикорезистентности, для выбора оптимальной схемы лечения требуется проведение микробиологического исследования с идентификацией возбудителя и выявления показателей его антибиотикорезистентности. Феномен полирезистентности, характерный для ряда возбудителей, требует активной разработки новых антибактериальных средств или поиска новых комбинаций антибиотиков, обладающих синергизмом бактерицидного действия по отношению к данным микроорганизмам.
«In vitro» activity of different antimicrobial agents on Gram-negative nonfermentative bacilli, excluding Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter spp. (Vay C.A., Almuzara M.N., Rodriguez C.H., Pugliese M.L., Lorenzo Barba F., Mattera J.C., Famiglietti A.M. Rev. Argent Microbiol., 2005;37(1):34-45).
Код вставки на сайт
Активность антибактериальных средств in vitro
Грамотрицательные неферментирующие микроорганизмы широко распространены в окружающей среде. Одной из серьезных проблем является диагностика вызванных ими инфекций, связанная с объективными трудностями их выделения и идентификации. Второй проблемой является то, что для них характерна полирезистентность к антимикробным препаратам, включая те, которые обычно активны против Pseudomonas aeruginosa.
В данном исследовании определялась антибактериальная активность in vitro различных препаратов по отношению к 177 выделенным в клинике штаммам неферментирующих бактерий (кроме Pseudomonas aeruginosa и Acinetobacter spp.). МПК определялась методом разведений в агаре. Использовали среду Мюллера-Хинтона. Оценивали активность ампициллина, пиперациллина, пиперациллин/тазобактама, сульбактама, цефоперазона, цефоперазон/сульбактама, цефтазидима, цефепима, азтреонама, имипенема, меропенема, колистина, гентамицина, амикацина, триметоприм/сульфаметоксазола, хлорамфеникола, эритромицина, рифампицина, норфлоксацина, ципрофлоксацина и миноциклина.
У 7 изолятов: Sphingobacterium multivorum(2), Sphingobacterium spiritivorum(1), Empedobacter brevis(1), Weeksella virosa(1), Bergeyella zoohelcum(1) и Oligella urethralis (1), вместо чувствительности к цефоперазону или сульбактаму определяли чувствительность к амоксициллин/клавуланату и ампициллин/сульбактаму.
Полирезистентность к антибактериальным препаратам была характерна для таких возбудителей, как Stenotrophomonas maltophilia, Burkholderia cepacia, Chryseobacterium spp., Myroides spp., Achromobacter xylosoxidans и Ochrobactrum anthropi.
В то же время, такие микроорганизмы, как Pseudomonas stutzeri, Shewanella putrefaciens-algae, Sphingomonas paucimobilis, Pseudomonas oryzihabitans, Bergeyella zoohelcum, Weeksella virosa и Oligella urethralis часто были чувствительны к большинству из тестируемых антибиотиков.
Учитывая, что различные виды возбудителей, образующих группу грамотрицательных неферментирующих микроорганизмов, демонстрируют различные показатели антибиотикорезистентности, для выбора оптимальной схемы лечения требуется проведение микробиологического исследования с идентификацией возбудителя и выявления показателей его антибиотикорезистентности. Феномен полирезистентности, характерный для ряда возбудителей, требует активной разработки новых антибактериальных средств или поиска новых комбинаций антибиотиков, обладающих синергизмом бактерицидного действия по отношению к данным микроорганизмам.
Мочевой пузырь
В области переднего отдела дна мочевого пузыря находятся три отверстия: два — устья мочеточников, мочеточниковые отверстия, ostia ureterwn, и одно — внутреннее отверстие мочеиспускательного канала. Отверстия расположены по углам мочепузырного треугольника, trigonum vesicae, наименее изменяющегося и наиболее фиксированного участка пузыря. В пределах этого треугольника слизистая оболочка лишена подслизистой основы и плотно, без складок, сращена с мышечным слоем. Мочеточниковые отверстия, ostia ureterwn, образуют правый и левый верхние углы треугольника. Оба отверстия соединены межмочеточниковой складкой, plica inter-ureterica, которая образована пучками мышц от обоих мочеточников. У вершины треугольника, расположенной спереди и внизу, находится полулунной формы внутреннее отверстие мочеиспускательного канала, ostium urelhrae internum.
Кзади от устья мочеиспускательного канала слизистая оболочка образует выпячивание, язычок пузыря, uvula vesicae, переходящий в гребень мочеиспускательного канала, crista urethralis. Верхнезадняя и частично боковые поверхности мочевого пузыря покрыты брюшиной: при переходе брюшины с пузыря на заднюю поверхность передней брюшной стенки образуется поперечная пузырная складка, plica vesicalis transversa. Сзади на уровне впадения мочеточников брюшина переходит с пузыря на прямую кишку, а у женщин — на матку. Своей передней, внебрюшинной, поверхностью мочевой пузырь прилегает к лобковому симфизу и верхним ветвям лобковых костей и отделен от них листком предпузырной фасции; в наполненном состоянии пузырь выходит из-за лобкового симфиза кверху, располагаясь позади прямых мышц живота. У мужчин ко дну пузыря прилегают семенные пузырьки, семявыносящие протоки и отчасти предстательная железа; в промежутке между семенными пузырьками ко дну мочевого пузыря, будучи отделена промежностнобрюшинным апоневрозом, примыкает передняя стенка ампулы прямой кишки. У женщин ко дну пузыря прилегает шейка матки и передняя стенка влагалища. Передненижний отдел мочевого пузыря, его шейка, примыкает у мужчин к заднему участку верхнепередней поверхности предстательной железы, у женщин — к мочеполовой диафрагме.
Нижние отделы боковых стенок мочевого пузыря, расположенные подбрюшинно, прилегают частично к тазовому дну, а в наполненном состоянии мочевого пузыря — к запирательным мышцам; у мужчин к ним прилегают семявыносящие протоки, у женщин — круглые связки матки. Иннервация: plexus hypogastrici superior et inferior. Кровоснабжение: aa.. vesicales, rectalis media (у женщин a. uterina).
Мужской мочеиспускательный канал
Мужской мочеиспускательный канал, urethra masculina, достигает в длину 20–23 см и делится на три части: предстательную, pars prostatica, перепончатую, pars membranacea, и губчатую, pars spongiosa. Он берет свое начало от мочевого пузыря внутренним отверстием мочеиспускательного канала, ostium urethrae internum, и заканчивается у наружного отверстия мочеиспускательного канала, расположенного на вершине головки пениса.
У мужчин уретра по своему ходу образует S-образный изгиб: первая, предстательная, часть, направляясь сверху вниз, образует с перепончатой и началом губчатой части выпуклую сзади дугу, которая огибает лобковый симфиз снизу, — подлобковую кривизну. Начало губчатого отдела уретры мужчины, проходящая через фиксированный связками участок полового члена, образует так называемую предлобковую кривизну.
Предстательная часть, pars prostatica, пронизывает предстательную железу сверху, сзади вниз и вперед. Ее длина составляет 3–4 см и начинается узкой частью от внутреннего отверстия мочеиспускательного канала (первое узкое место канала). По середине ее протяжения сузествует специальное расширение мочеиспускательного канала (первое расширение). На задней стенке слизистой уретры расположена срединная складка — так называемый гребень мочеиспускательного канала, crista urethralis, он, в свою очередь, переходит в продольно расположенный семенной холмик, colliculus seminalis, на вершине семенного холмика существует особый продольный карман — предстательная маточка, utriculus prostaticus.
Губчатая часть, pars spongiosa, —достигает длины 17–20 см. Наиболее широкий отдел заложен в луковице полового члена и достигает на вершине головки губчатого тела наружного отверстия мочеиспускательного канала. В заднюю (нижнюю) стенку луковичной части открываются устья бульбоуретральных желез. Проксимальнее наружного отверстиуретры расположенотретье по счету расширение — ладьевидная ямка мочеиспускательного канала, fossa navicularis urethrae.
Оболочка мочеиспускательного канала представлена эластическими волокнами. Выраженный мышечный слой можно увидеть лишь в предстательной и перепончатой частях. Слизистая оболочка мочеиспускательного канала выстлана переходным эпителием в прежстательной части, в перепончатой — многорядным призматическим, в начале губчатой — однослойным призматическим, а на остальном протяжении — многорядным призматическим.
Преддверие влагалища
Под преддверием влагалища, vestibulum vaginae, в анатомии понимают пространство между малыми половыми губами. Это небольшого размера впадина в промежности женщины, ограниченная спереди клитором, сзади — уздечкой малых половых губ, с боков — внутренними поверхностями малых половых губ. На уровне девственной плевы через отверстие влагалища, ostium vaginae,оно сообщается собственно с вагиной.
Ниже клито ра, но несколько выше собственно входа во влагалище на вершине сосочка расположено наружное отверстие мочеиспускательного канала, ostium urethrae externum. Между двумя отверстиями при осмотре можно разглядеть мочеиспускательный киль влагалища, carina urethralis vaginae.
Спереди от уздечки малых половых губ и сзади от собственно преддверия находится небольшое углубление — ямка преддверия влагалища, fossa vestibuli vaginae: ее лучше видно у нерожавших женщин. Около наружного отверстия мочеиспускательного канала расположены устья правого и левого окольных мочеиспускательных протоков, ductus paraurethrales dexter et sinister. По бокам от преддверия влагалища существуют отверстия — устья протоков больших желез преддверия, glandulae vestibulares majores, и малых желез преддверия, glandulae vestibulares minores.
БУРДА
Виктор Дмитриевич
Врач УЗИ-диагностики
МАМАЙ
Ирина Николаевна
Врач-уролог, врач УЗИ-диагностики
КУЗНЕЦОВА
Мария Николаевна
Врач-гинеколог высшей категории
ЯКОВЛЕВ
Михаил Владимирович
Глав.врач, уролог, андролог высшей категории
Видео
Дакриоцистит кроликов
Key words: Dacryocystitis, Rabbits Dental, disease Nasolacrimal canal irrigation, Conjunctivitis Veterinary ophthalmology
Ключевые слова: дакриоцистит, кролики, дентальная болезнь, промывание носослезного канала, конъюнктивит, ветеринарная офтальмология
Сокращения: в/м –внутримышечно; п/к – подкожно; в/в – внутривенно; в/н –внутрь
Дакриоцистит – воспаление слезного мешка. У кроликов носослезный канал имеет множество резких изгибов и суженные области, которые могут быть связаны с частой обструкцией канала и дакриоциститом у этого вида. Дакриоцистит у кроликов обычно вторичен по отношению к заболеваниям зубов. Стоматологическое заболевание или костные изменения верхней челюсти, вторичные по отношению к пищевому гиперпаратиреозу, также могут привести к развитию обструкции канала.
Dacryocystitis is an inflammation of the lacrimal sac. In rabbits the nasolacrimal duct has multiple sharp bends and constricted areas, which may be associated with the frequency of duct obstruction and dacryocystitis in this species. Dacryocystitis in rabbits is usually secondary to dental disease. Dental disease or osseous changes to the maxillary bone secondary to nutritional hyperparathyroidism may also lead to the development of duct obstruction.
Особенности носослезной системы кроликов
Носослезная система кролика необычна тем, что в ней присутствует только одна довольно крупная нижняя слезная точка, которая расположена глубоко в медиальной части вентрального конъюнктивального мешка у основания наружной поверхности третьего века (рис.1).
Рис. 1. Слезная точка кролика (левый глаз)
Носослезный канал кроликов проходит извилистый путь от нижней слезной точки через слезную и верхнечелюстную кости и имеет два резких изгиба –проксимальный и дистальный, связанных с сужением канала (рис.2).
Рис. 2. Носослезный канал кролика(проксимальный и дистальный Рис. 3. Носослезный канал кролика (показаны проксимальный изгиб в непосредственной близости
Канал проходит близко к корням как моляров, так и резцов (рис.3) и выходит в слизистую оболочку носа, открываясь носовой точкой (рис.4).
Рис. 4. Ретроградное промывание носослезного канала через носовую
точку у кролика [11]
Рис. 5. Дакриоцисторинограмма кролика с расширенным
носослезным каналом (Francis Harcourt-Brown)
Наиболее распространенными заболеваниями носослезной системы домашних кроликов, которые сопровождаются окулярными нарушениями и представляют трудности в лечение являются эпифора и дакриоциститы. Эпифора у кроликов вызвана удлинением корней резцов в результате чего возникает препятствие нормальному носослезному дренажу, когда носослезный канал делает изгиб вентрально, блокируясь корнями этих зубов, как показано на дакриоцисторинограмме (Рис.5). В отличии от эпифоры дакриоциститы и ретробульбарные абсцессы(Рис.6,15)
Рис. 6. Экзофтальм на фоне ретробульбарного абсцесса у кролика
у кроликов возникают за счет абсцессов корней молярных зубов. Широкий спект микроорганизмов был культивирован из этой области, включая Neisseria, Moraxella, Bordetella,Streptococcus viridans, Oligella urethralis, Pasteurella и Pseudomonas.
В этом выпуске журнала мы подробно остановимся на дакриоциститах кроликов.
Дакриоцистит представляет собой воспаление слезного мешка. Дакриоцистит может быть результатом вирусной, бактериальной или микотической инфекции и/или инородного тела. Кроме того, травма носа или неопластические процессы могут предрасполагать к обструкции дренажного аппарата. Однако у кроликов дакриоцистит зачастую связан с дентальной болезнью. Вторичное воспаление вызывает отек, из-за которого дренажная система подвергается опасности и далее сокращается дренирование слезы. Проблемы особенно часто возникают в верхней части канала, где он окружен костным остовом. Отек в этой области может оказывать давление только внутрь, поэтому обструкция развивается быстро. Сформированный гнойный экссудат ищет выход, который обычно занимает путь наименьшего сопротивления кверху в направлении конъюнктивального мешка, кроме того, может образовываться фистула на коже нижнего века несколько миллиметров под медиальным кантом (рис.7).
Рис. 7. Дакриоцистит кролика
Гнойные выделения из носослезного канала являются важным признаком дакриоцистита, однако выделения могут варьировать от водянистой белой жидкости, не отличающейся от той, которая иногда видна в случае эпифоры у кроликов, но только более обильной, до густых кремообразных белых выделений, что встречается наиболее часто (рис.8,)
Рис. 8. Дакриоцистит кролика
при дакриоцистите. Гнойный экссудат часто вызывает и поддерживает вторичный хронический конъюнктивит, блефарит и язвенный кератит (рис.9).
Рис. 9. Язвенный кератит вторичный к дакриоциститу у кролика
Наиболее часто при дакриоцистите мы наблюдаем вторичный хронический конъюнктивит. Ключевая особенность исследования таких случаев заключается в определении являются ли выделения из глаз результатом локализованного первичного конъюнктивита или же, что бывает наиболее часто, результатом дакриоцистита.При дакриоциститах можно заметить появление слизисто-гнойного материала непосредственно из слезной точки или же он может проявляться путем надавливания при помощи пальца на нижнее веко. Это будет способствовать выделению капли гноя даже в ранних случаях дакриоцистита и является верным признаком того, что существует воспаление и инфекция ниже в носослезном канале, а не просто в конъюнктивальном мешке. Таким образом дакриоцистит можно отличить от первичного конъюнктивита. Если все же останутся сомнения, конъюнктивит это или дакриоцистит, можно дифференцировать эти два состояния путем канюлирования и орошения носослезного канала(Рис.10).
Рис. 10. Бужирование и промывание носослезного канала кролику
Легкая санация, без появления гнойного материала вокруг канюли или из носа предполагает, что дакриоцистита нет, выделение из носа жидкости с гноем подтверждает дакриоцистит (рис.11).
Рис. 11. Обильные гнойные выделения из левой Рис. 12. Расположение зубов у кролика
ноздри у кролика с дакриоциститом в ходе
промывания носослезного канала
Полученный материал может быть собран для бакпосева с чувствительностью к антибиотикам.
Когда выделения особенно густые, они могут привести к развитию отека роговицы или выраженному язвенному кератиту в ткани рядом со слезной точкой (рис.9). В некоторых случаях может отмечаться периокулярный отек, что является плохим прогностическим признаком и в этом случае эффективное лечение маловероятно.
Извилистый путь носослезного канала кроликов и его близость к корням моляров и резцов (рис.3,12) означает, что он очень подвержен окклюзии и дилятации при воспалении, а, следовательно, к рецидивирующим дакриоциститам. Образование расширения слезного мешка или явный разрыв канала рядом с абсцессом корня зуба приводит к обильным непрерывным гнойным выделениям. Иногда первичная функциональная обструкция канала может быть вызвана стерильными масляными каплями неопределенного происхождения (Marini et al., 1996) или густым гнойным материалом. Дентальная болезнь кроликов или костные изменения в верхней челюсти, вторичные по отношению к питательному гиперпаратиреозу (данное состояние вызвано диетическим дефицитом кальция особенно у карликовых кроликов, что подробно описано Frances Harcourt-Brown, чья основная работа продемонстрировала питательный и эндокринный этиопатогенез этого состояния), также могут привести к развитию обструкции канала. Из них дентальная болезнь кроликов является самой распространенной причиной. Малоклюзия (неправильный прикус) зубов вызывает их чрезмерный рост. Наиболее часто встречается малоклюзия моляров и премоляров и реже – резцов у кроликов, в результате чего происходит ретропульсия от зуба и сдавливание носослезного канала с вторичным инфицированием.
Бактериальная инфекция также играет роль в дакриоцистите. Pasteurella multocida считается наиболее распространенным бактериальным возбудителем у кроликов, однако может быть выделен широкий спектр бактерий. Marini (1996) с соавторами показал широкий спектр микроорганизмов, включая Neisseria spp., Moraxella spp., Bordetella spp., Pseudomonas spp., Streptococcus viridans и Oligella urethralis в бактериальной флоре от кроликов, пострадавших исключительно от эпифоры. Какие организмы были патогенными, а какие – часть нормальной флоры, не ясно, поскольку одни и те же организмы были обнаружены в носослезных смывах здоровых кроликов. Наиболее часто изолируемый микроорганизм Pasteurella multocidа в более раннем исследовании дакриоцистита (Petersen-Jones and Carrington,1988), не был обнаружен. В обзоре стафилококковой болезни кроликов, более 60% из них имели носовой экссудат и конъюнктивиты (Snyder et al., 1976). В более позднем исследовании (Cobb et al., 1999) Staphylococcus spp. был изолирован от 40% кроликов с окулярной инфекцией, тогда как P. Multocida была выявлена лишь в 12% случаев.
Первичная диагностика дакриоцистита обычно проста, учитывая патогномоничные клинические признаки гнойных выделений из конъюнктивального мешка и отрицательного выхода флюоресцеинового красителя в нос (Тест Джонса 1) со стороны поражения(рис.13, 14).
Рис. 13. Нормальный тест Джонса 1
Рис. 14. Патологический тест Джонса 1 Рис. 15. Ретробульбарный абсцесс у кролика (УЗИ картина
Однако определение патологии, лежащей в основе данного заболевания может быть гораздо более сложной задачей.
Дакриоцистит имеет вид хронического гнойного конъюнктивита, с нормальным или повышенным значением теста Ширмера. После того, как конъюнктивальный мешок был орошен, давление на область медиального канта вызывает появление гнойного экссудата из нижней слезной точки.
Рис. 16. Затруднение визуализации слезной точки при тяжелом
конъюнктивите на фоне дакриоцистита кролика
Рис. 16. Рентгенограмма кролика с ретробульбарным абсцессом
на фоне дентальной болезни
КТ или обычная рентгенограмма головы(рис.17), иногда дополненная дакриоцисторинографией, будут определять структурные аномалии протока, расположение его обструкции, помогут в дифференциации основной причины возникновения дакриоцистита, и продемонстрируют взаимосвязь между каналом и любой зубной патологией, а также потребуются для определения наиболее эффективного метода коррекции поражения.
Дакриоцисторинография может быть крайне полезной в диагностике дакриоцистита для выявления точного местоположения окклюзии протока и воспаления. Для данной процедуры носослезный канал канюлируется 23-G лакримальной канюлей, через которую в нижнюю слезную точку вводится 0,2 мл неионного рентгеноконтрастного диагностического средства Омнипак с последующими латеральными и дорсовентральными рентгенограммами.
Данные цитологии и бактериального культивирования слезной жидкости могут применяться в качестве дополнительных диагностических исследований, хотя в большинстве случаев, когда ситуация ясна по данным рентгенограмм, не являются необходимыми.
Лечение первоначально направлено на исправление лежащих в основе данной патологии аномалий, особенно коррекции любого заболевания зубов (окклюзионная коррекция).
Далее, как с диагностической, так и с лечебной целью носослезная дренажная система канюлируется и орошается для удаления экссудата. Канал может быть промыт стерильным физиологическим раствором (можно добавить 10% раствор ацетилцистеина к ирригационной жидкости для облегчения удаления экссудата и в качестве антиколлагеназного средства), либо растворами антибиотиков, такими как энрофлоксацин, йод-повидон (бетадин 1:50) после двукратной местной анестезии алкаином или инокаином в интервале 1-2 минуты.
Как было сказано выше, у кролика присутствует одна единственная нижняя слезная точка, которую лучше всего канюлировать давлением сверху на нижнее веко. Для этого необходимо оттянуть вентрально медиальную часть нижнего века, что заставляет точку открыться двумя надутыми «губами» (рис.1). Для канюлирования слезной точки используют узкую лакримальую канюлю (23-25G). Провести канюлирование и промывание носослезного канала при обычной эпифоре не так сложно, как при тяжелом вторичном пролиферативном конъюнктивите с гиперемированной и гиперплазированной конъюнктивой(рис.16), часто наблюдаемом при дакриоциститах, который может приводить к сложности или невозможности носослезной интубации. В таких обстоятельствах затруднение канюлирования зачастую требует создания новой точки через пролиферативную ткань. Если невозможно канюлировать проксимальную слезную точку, может быть канюлирована дистальная носовая точка (рис.4) и таким образом осуществляется ретроградное промывание носослезного канала. Если канал не может быть промыт, долгосрочная системная антибактериальная терапия может потребоваться для борьбы с инфекцией.
Изначально канал промывается ежедневно в течение 2 недель, а затем через день в течение следующего месяца. Поэтому для особо стрессующих животных такое частое промывание канала может быть более опасно, чем сам дакриоцистит. Кроме того, при отсутствии навыка промывания носослезного канала, а также при проведении промывания канала без седации у агрессивных животных возможна перфорация слезного канальца с попаданием жидкости в ретробульбарное пространство. Если после промывания канала проходимость восстанавливается, в слезный мешок вводят комбинацию вязких растворов антибиотиков и кортикостероидов (местные кортикостероиды можно применять только при флюоресцин- отрицательном окрашивании роговицы). Это лечение повторяется 2-4 раза в день в течение, как минимум, 1 недели. Только лишь местное введение в конъюнктивальный мешок антибиотиков само по себе не особенно эффективно, учитывая, что канал уже заблокирован гнойным материалом. Эта проблема в случае любого вида дакриоцистита означает, что ирригация (промывание) является гораздо лучшим вариантом, чем просто применение местных антибиотиков. Однократная промывка канала после канюлирования с последующим частым введением местных антибиотиков может иметь краткосрочный эффект и редко является методом контроля проблемы в долгосрочном периоде. Большинство авторов рекомендует регулярное промывание канала.
По нашим данным, наилучшую эффективность дает комплексный подход к лечению дакриоциститов в виде устранения причины их возникновения, промывания носослезного канала, местной и системной терапии.
В качестве местной терапии после промывания носослезного канала рекомендовано применение:
– антибактериальных препаратов (фуциталмик, флоксал и т.д.)
– антиколлагеназных препаратов (АЦЦ/флумуцил) для облегчения удаления выделений из конъюнктивального мешка, а также в случае наличия вторичного язвенного кератита
– корнеопротекторов (корнерегель, баларпан и т.д.).
В качестве системной терапии применяются антибактериальные, противовоспалительные и антацидные препараты.
Короткий курс системного антибиотика может дать хороший результат в лечении дакриоцистита. Для кратковременной терапии рекомендован оральный азитромицин в виде детской суспензии (200 мг в 5 мл) применяемый в дозе 15-30 мг/кг в/н каждые 24 ч. на протяжении 15 дней или же 4-5 мг/кг в/м каждые 48 ч. 7 инъекций. У данного вида животных важно крайне осторожно относиться к пероральному приему системных антибиотиков из-за риска развития энтеротоксикемии. Считается, что азитромицин не имеет этого побочного эффекта. Есть данные, что двухнедельный курс этого препарата может иметь положительные результаты, продолжающиеся два и более месяца до другого необходимого курса.
Другим вариантом является долгосрочный оральный антибиотик. Препаратом выбора для длительного применения является энрофлоксацин. Известным фактом является то, энрофлоксацин (Baytril) может вызывать артропатию у молодых собак, но подобных эффектов с использованием стандартных доз у кроликов не сообщалось. Подкожные и внутримышечные инъекции препарата могут вызывать некроз мышц или стерильные абсцессы, поэтому необходимо разбавлять препарат с водой для инъекций перед парентеральным введением или же добавлять в питьевую воду. Энрофлоксацин 5 мг/кг/день в питьевой воде может контролировать данное состояние и, как это ни удивительно, не имеет энтеротоксимического эффекта и не генерирует устойчивые штаммы.
Кроме того, в иностранных источниках описано применение доксициклина (2.5 мг/кг в/н каждые 12 часов или 4 мг/кг в/н каждые 24 ч.) и бициллин-3 ( 60 000 ЕД/кг в/м каждые 48 ч.; не давать перорально пенициллин кроликам).
мелоксикам: 0,2 мг/кг п/к, в/м х 24 ч.;
0,3 мг/кг ПО х 24 ч., 10 дней
циметидин: 5-10 мг/кг в/н; п/к; в/м; в/в х 6-12 ч.;
фамотидин: 0.5 мг/кг в/н; п/к; в/в х 12 ч..
Прогноз при дакриоциститах осторожный, а в запущенных случаях –неблагоприятный. Часто встречаются рецидивы. В то время, как лечение ранних стадий дакриоциститов путем промывания носослезного канала антибактериальным раствором с последующим местным лечением может давать положительный ответ, значительному количеству животных требуется длительное лечение. Однако долгосрочное лечение данного состояния может быть затруднено, и поддерживающая терапия таких пациентов зачастую является единственным вариантом.
1. BSAVA Manual of Small Animal Ophthalmology. Simon Petersen – Jones, Sheila Crispin, 2002.
2. Ophthalmology for the Veterinary Practitioner. Frans C. Stades, Milton Wyman, Michael H. Boevé, Willy Neumann, Bernhard Spiess, 2007.
3. Slatter’s Fundamentals of Veterinary Ophthalmology, Edition 4 ISBN: 978-0-7216- 0561-6 Copyright © 2008, 2001, 1990, 1981 by Saunders, an imprint of Elsevier Inc.
4.Veterinary Ocular Pathology a comparative review. Richard R. Dubielzig, Kerry Ketring, Gillian J. McLellan, Daniel M. Albert, 2010.
5.Veterinary ophthalmology/edited by Kirk N. Gelatt, Brian C. Gilger, Thomas J. Kern. – 5th ed.
6. Opthalmic Disease in Veterinary medicine.Charles L.Martin, 2010.
7. Essentials of Veterinary ophthalmology. Kirk N. Gelatt, 2014.
8. Color Atlas of Canine and Feline Ophthalmology. Joan Dziezyc, Nicholas J. Millichamp, 2004.
10. Barnett Кeith: Diagnostic Atlas of Veterinary Ophthalmology, 2006.